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上海富衡 | 细胞培养常用的生长因子浓度比例

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在细胞培养中,生长因子的浓度需根据细胞类型、培养目的(如促增殖、维持干性、诱导分化等)及具体实验设计进行优化。以下是常用生长因子的典型浓度范围及应用场景参考,实际使用时需通过预实验调整:


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常见生长因子及浓度范围


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小鼠脑微血管内皮细胞株;bend.3

1、表皮生长因子(EGF)

功能:促进上皮细胞、干细胞增殖,抑制分化。

浓度:

  • 常规培养:10–50 ng/mL(如 HEK293、A431 细胞)。

  • 干细胞维持(如人胚胎干细胞):50–100 ng/mL(常与 FGF2 联用)。

示例:在肺癌细胞 A549 培养中,10 ng/mL EGF 可增强贴壁生长。

2、成纤维细胞生长因子(FGF 家族)

碱性 FGF(bFGF/FGF2):

功能:促细胞增殖、血管生成、神经保护。

浓度:

  • 干细胞培养(如小鼠胚胎干细胞):10–20 ng/mL(与 LIF 联用维持干性)。

  • 神经细胞分化:5–10 ng/mL(诱导神经祖细胞增殖)。

酸性 FGF(aFGF/FGF1):

浓度:5–50 ng/mL(较少用,多用于成纤维细胞或内皮细胞培养)。

3、血小板源性生长因子(PDGF)

功能:刺激间充质细胞(如成纤维细胞、平滑肌细胞)增殖、迁移。

浓度:

  • 常规培养:10–50 ng/mL(如人脐静脉内皮细胞 HUVEC)。

  • 伤口修复模型:50–100 ng/mL(增强细胞迁移能力)。

4、胰岛素样生长因子(IGF-1/IGF-2)

功能:模拟胰岛素作用,促细胞代谢、增殖,抑制凋亡。

浓度:

  • 肿瘤细胞培养(如乳腺癌 MCF-7):10–50 ng/mL。

  • 干细胞扩增:50–100 ng/mL(与其他因子联用,如 hPSC 培养)。

5、神经生长因子(NGF)

功能:促进神经元存活、分化,维持交感 / 感觉神经功能。

浓度:

  • 原代神经元培养:20–50 ng/mL(如大鼠背根神经节细胞)。

  • 神经干细胞诱导:10–20 ng/mL(联合 BDNF 促进分化)。

6、血管内皮生长因子(VEGF)

功能:促进内皮细胞增殖、血管生成。

浓度:

  • 内皮细胞培养:50–100 ng/mL(如 HUVEC 细胞成管实验)。

  • 肿瘤血管模型:100–200 ng/mL(增强血管网络形成)。

7、转化生长因子 -β(TGF-β)

功能:双向调节(低浓度促增殖,高浓度诱导分化 / 抑制)。

浓度:

  • 促间充质干细胞分化(如成骨 / 软骨诱导):5–10 ng/mL。

  • 肿瘤细胞侵袭研究:10–20 ng/mL(诱导上皮 - 间质转化,EMT)。


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浓度优化注意事项



  • 细胞特异性:

    癌细胞可能对生长因子更敏感(如乳腺癌细胞 MDA-MB-231 需低浓度 EGF,5–10 ng/mL),而原代细胞常需更高浓度(如原代角质形成细胞需 50 ng/mL EGF)。

  • 组合使用:

    干细胞培养常需多种因子协同(如 hPSC 培养:bFGF 40 ng/mL + EGF 20 ng/mL + Noggin 100 ng/mL)。

  • 产品活性差异:

    不同厂家生长因子比活性不同(如 PeproTech vs. R&D Systems),需按说明书调整,首次使用建议设置浓度梯度(如 1、5、10、50、100 ng/mL)。

  • 溶剂与储存:

    多数生长因子需溶于含载体蛋白(如 0.1% BSA)的 PBS,分装冻存于 - 20℃,避免反复冻融导致活性下降。




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经典培养体系示例



人胚胎干细胞(hESC):

配方:bFGF 40 ng/mL + TGF-β 5 ng/mL + 基础培养基(mTeSR1 或 Essential 8)。

神经干细胞(NSC):

增殖培养基:bFGF 20 ng/mL + EGF 20 ng/mL(无血清培养,维持悬浮神经球)。

肿瘤细胞侵袭模型:

Transwell 实验:上室细胞无因子,下室培养基含 PDGF 50 ng/mL + VEGF 100 ng/mL(诱导细胞迁移)。

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总结


生长因子浓度无统一标准,需通过预实验(如 CCK-8 细胞增殖实验、细胞形态观察)确定最适浓度。核心原则:从低浓度开始(避免高浓度抑制),结合细胞类型、实验目的及文献报道逐步优化。





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