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上海富衡 | 助力生物科学领域新工具:富衡THP-1与U937成破骨细胞诱导试剂盒的全新上市!

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破骨细胞(Osteoclast,OC)是骨吸收的主要功能细胞,在骨发育、生长、修复、重建中具有重要的作用。破骨细胞起源于血系单核-巨噬细胞系统,是一种特殊的终末分化细胞,它可由其单核前体细胞通过多种方式融合形成巨大的多核细胞。破骨细胞活性一旦异常,就会导致平衡被打破,从而引发骨硬化和骨质疏松等代谢性骨疾病。因此,破骨细胞的体外培养与研究对于临床疾病的研究非常重要。

抗酒石酸酸性磷酸酶(tartrate resistant acid phosphatase,TRAP)是破骨细胞的标志性酶,特异性分布于破骨细胞中。TRAP 染色试剂盒即是用于显示组织中的破骨细胞。其中基本原理在于,在含酒石酸的酸性条件下,抗酒石酸酸性磷酸酶 TRAP 能将萘酚 AS-BI 磷酸盐水解,产生的萘酚 AS-BI 与六偶氮副品红结合,形成非水溶性的酒红色物质沉积在酶活性原位,从而实现对抗酒石酸酸性磷酸酶的显色和定位。


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01
产品介绍



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富衡生物THP-1与U937成破骨诱导分化试剂分为三个部分,分别是细胞、成破骨诱导液、 TRAP染色试剂盒。成破骨诱导液需先进行诱导成巨噬细胞,再进一步诱导成破骨。


成巨噬细胞诱导分化完全培养基液的配制方法


  1. 配制前将成破骨诱导添加物 A 放置于室温(>20℃)冰箱内完全融化。

  2. 用 75%医用酒精擦拭消毒试剂盒中各瓶/管表面。

  3. 取 50mL THP-1U937完全培养基,然后将成破骨诱导添加物 A 全部加入 THP-1U937 完全培养基中。

  4. 轻轻颠倒摇晃配制好的成巨噬细胞诱导分化完全培养基,使其混合均匀。


成破骨诱导分化完全培养基液的配制方法


  1. 配制前将试剂盒中的成破骨诱导添加物 B 和成破骨诱导添加物 C 放置于 4℃冰箱内完全融化。

  2. 用 75%医用酒精擦拭消毒试剂盒中各瓶/管表面。

  3. 取 100mL THP-1U937 完全培养基,然后将成破骨诱导添加物 B 和成破骨诱导添加物 C 全部加入 THP-1U937 完全培养基中。

  4. 轻轻颠倒摇晃配制好的成破骨诱导分化完全培养基,使其混合均匀。


特别建议:如短时间内无法使用完全部的培养基,建议按照上述配方比例分批配制。剩余成分可以分装为合适的规格,按各自保存条件储存,切勿反复冻融。



02
成破骨诱导分化操作规程


分化流程(以 12 孔板为例)


  1. 当 THP-1 细胞融合度达到 80-90%时,收集细胞并计数;

  2. 使用 37℃预热的成巨噬细胞诱导分化培养基重悬细胞,按照 5×105~1×106 cells/孔密度进行铺板,每孔加入 1mL 成巨噬细胞诱导分化培养基。

  3. 将细胞置于 37℃,5% CO2的培养箱中进行培养 48h。

  4. 48h 换液,换成 37℃预热的成破骨诱导分化培养基,每孔 1mL。

  5. 成破骨诱导培养过程中,每隔 1 天,吸去孔板中的诱导液,加入预热好的新鲜的成破骨诱导分化完全培养基;

  6. 诱导分化 4-10 天,可观察到成熟的多核破骨细胞。

  7. 诱导完成后即可进行染色或者下一步实验。



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03

TRAP 染色


一、配制 TRAP 工作液


  1. 取 50 μL 副品红溶液与 50 μL 亚硝酸钠溶液在洁净离心管中混匀,得到六偶氮副品红溶液;

  2. 向第 1 步的 100 μL 六偶氮副品红溶液中加入 100 μL AS-BI 磷酸盐底物溶液,吹吸数次充分混匀。

  3. 吸取 1.8 mL 反应缓冲液加入到第 2 步的混合液中充分混匀;

  4. 第 3 步的混合液经针式滤器过滤(0.45 μm 水系滤膜)即得到 TRAP 工作液。


注意:务必按照所属顺序配制工作液。每个组织点大约需要 200-300 μL 工作液,根据使用量配制,现配现用,避免浪费。


二、染色操作


  1. 细胞固定:吸除成破骨诱导培养基,加入 4%多聚甲醛室温固定 15~30 min,蒸馏水洗3 次。

  2. 细胞破膜:(不做细胞核染色,可不做此步骤)以 0.2% Triton X-100 溶液覆盖细胞进行破膜处理 20~30 min,蒸馏水轻洗 3 遍。

  3. 孵育染色:将 TRAP 工作液加到细胞孔板内覆盖细胞,37℃避光孵育 1~2h,蒸馏水洗 3 次。

  4. 细胞核复染(可选,自备相关试剂):吸除孵育液并水洗,以苏木素染液进行染核。

  5. 显微镜下观察,拍照。


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